若對健康幼齡狗分別作表實驗處理，實驗結果與實驗處理相符合的是 實驗處理 實驗結果 A 摘

A、因摘除了甲狀腺，注射適量的促甲狀腺激素也不起作用，故實驗結果應為發育遲緩，新陳代謝減慢，A錯誤；B、因摘除***不僅影響胰島素的分泌量，也影響胰高血糖素分泌量，B錯誤；C、雌性激素能激發并維持雌性的第二性征，C正確；D、因垂體分泌的生長激素為大分子，飼喂能被消化道中的酶催化水解而失去作用，D錯誤．故選：C．

動物學實驗的實驗動物常見的處理方法

一、編號實驗動物常需要標記以示區別。編號的方法很多，根據動物的種類數量和觀察時間長短等因素來選擇合適的標記方法。(一)掛牌法：將號碼烙壓在圓形或方形金屬牌上(最好用鋁或不銹鋼的,它可長期使用不生銹),或將號碼按實驗分組編號烙在栓動物頸部的皮帶上，將此頸圈固定在動物頸部。該法適用于狗等大型動物。(二)打號法：用刺數鉗(又稱耳號鉗)將號碼打在動物耳朵上。打號前用蘸有酒精的棉球擦凈耳朵，用耳號鉗刺上號碼，然后在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。該法適用于耳朵比較大的兔、狗等動物。(三)針刺法：用七號或八號針頭蘸取少量碳素墨水，在耳部、前后肢以及尾部等處刺入皮下，在受刺部位留有一黑色標記。該法適用于大小鼠、豚鼠等。在實驗動物數量少的情況下，也可用于兔、狗等動物。(四)化學藥品涂染動物被毛法：經常應用的涂染化學藥品有涂染紅色：0.5%中性紅或品紅溶液涂染黃色：3-5%***溶液涂染黑色：煤焦油的酒精溶液根據實驗分組編號的需要，可用一種化學藥品涂染實驗動物動物背部被毛就可以。如果實驗動物數量較多，則可以選擇兩種染料。該方法對于實驗周期短的實驗動物較合適，時間長了染料易退掉；對于哺乳期的子畜也不適合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。(五)剪毛法：該法適用于大、中型動物，如狗、兔等。方法是用剪毛刀在動物一側或背部剪出號碼，此法編號清楚可靠，但只適于短期觀察。(六)打孔或剪缺口法：可用打孔機在兔耳一定位置打一小孔來表示一定的號碼。如用剪子剪缺口,應在剪后用滑石粉捻一下,以免愈合后看不出來。該法可以編至1～9999號，此種方法常在飼養大量動物時作為終身號采用。二、分組(一)分組的原則：進行動物實驗時，經常需要將選擇好的實驗動物按研究的需要分成若干組。動物分組應按隨機分配的原則，使每只動物都有同等機會被分配到各個實驗組與對照組中去，以避免各組之間的差別,影響實驗結果，特別是進行準確的統計檢驗,必須在隨機分組的基礎上進行。每組動物數量應按實驗周期長短、實驗類型及統計學要求而定。如果是慢性實驗或需要定期處死動物進行檢驗的實驗，就要求選較多的動物，以補足動物自然死亡和認為處死所喪失的數量，確保實驗結束時有合乎統計學要求的動物數量存在。(二)建立對照組：分組時應建立對照組。1.自身對照組：是指實驗數據而言。實驗動物本身在實驗處理前、后兩個階段的各項相關數據就分別是對照組和實驗組的實驗結果，此法可排除生物間的個體差異。2.平行對照組：有正對照組和負對照組兩種。給實驗組動物某種處理，而給正對照組用同樣方法進行處理，但并不采用實驗所要求的藥物或手段，負對照組則不給任何處理。3.具體分組時，應避免人為因素,隨機把所有的動物進行編號，然后令其雙數為A組(實驗組),單數為B組(對照組)即可或反之。如果要分若干個組時，應該用隨機數字表示進行完全隨機分組。一、實驗動物的除毛在動物實驗中，被毛有時會影響實驗操作與觀察，因此必須除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脫毛等。(一)剪毛法：剪毛法是將動物固定后，先用蘸有水的紗布把被毛浸濕，再用剪毛剪刀緊貼皮膚剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮膚。剪下的毛應集中放在一容器內，防止到處飛揚。給狗、羊等動物采血或新生乳牛放血***血清常用此法。(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳緣靜脈注射或尾靜脈注射時常用此法。(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去動物被毛的方法。如動物被毛較長，先要用剪刀將其剪短，再用刷子蘸溫肥皂水將剃毛部位浸透，然后再用剃毛刀除毛。本法適用于暴露外科手術區。(四)脫毛法：脫毛法是用化學藥品脫去動物被毛的方法。首先將被毛剪短，然后用棉球蘸取脫毛劑，在所需部位涂一薄層，2～3分鐘后用溫水洗去脫落的被毛，用紗布擦干，再涂一層油脂即可。適用于狗等大動物的脫毛劑配方為：硫化鈉10g，生石灰15g，溶于100ml水中。適用于兔、鼠等動物的脫毛劑的配方為：1.硫化鈉3g,肥皂粉1g,淀粉7g,加適量水調成糊狀；2.硫化鈉8g,淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3.硫化鈉8g溶于100ml水中。二、實驗動物的給藥在動物實驗中，為了觀察藥物對機體功能、代謝及形態引起的變化，常需要將藥物注入動物體內。給藥的途徑和方法多種多樣，可根據實驗目的、實驗動物種類和藥物劑型、劑量等情況確定。(一)注射給藥法1.皮***射注射時用左手拇指及食指輕輕捏起皮膚，右手持注射器將針頭刺入,固定后即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在后大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外側注射，拔針時，輕按針孔片刻，防藥液逸出。2.皮內注射此法用于觀察皮膚血管的通透性變化或觀察皮內反應。如將一定量的放射性同位素溶液、顏料或致炎物質、藥物等注入皮內，觀察其消失速度和局部血液循環變化，作為皮膚血管通透性觀察指標之一。方法是：將動物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮試針頭緊貼皮膚皮層刺入皮內，然后使針頭向上挑起并再稍刺入，即可注射藥液。注射后可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。3.肌肉注射當給動物注射不溶于水而混懸于油或其他溶劑中的藥物時,常采用肌肉注射。肌肉注射一般選用肌肉發達、無大血管經過的部位，多選臀部。注射時針頭要垂直快速刺入肌肉，如無回血現象即可注射。給大、小鼠作肌肉注射時，選大腿外側肌肉進行注射。4.腹腔注射先將動物固定,腹部用酒精棉球擦試消毒，然后在左或右側腹部將針頭刺入皮下，沿皮下向前推進約0.5厘米，再使針頭與皮膚呈45度角方向穿過腹肌刺入腹腔，此時有落空感，回抽無腸液、尿液后，緩緩推入藥液。此法大小鼠用的較多。5.靜脈注射是將藥液直接注射于靜脈管內，使其隨著血液分布全身,迅速奏效。但排泄較快，作用時間較短。6.淋巴囊注射蛙類常采用此法,其皮下有數個淋巴囊，注入藥物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭部淋巴囊常作為蛙類給藥途徑。一般多選用腹部淋巴囊給藥。注射時將針頭從蛙大腿上端刺入，經大腿肌層入腹壁肌層，再進入腹壁皮下，即進入淋巴囊，然后注入藥液。(二)經口給藥法1.口服法：把藥物放入飼料或溶于飲水中讓動物自動攝取。此法優點在于簡單方便，缺點是不能保證劑量準確。一般適用于對動物疾病的防治或某些藥物的毒性實驗，***某些與食物有關的人類疾病動物模型。2.灌胃法：在急性實驗中,多采用灌胃法。此法劑量準確。灌胃法是用灌胃器將所應投給動物的藥灌到動物胃內。灌胃器由注射器和特殊的灌胃針構成。小鼠的灌胃針長約4～5cm，直徑為1mm，大鼠的灌胃針長約6～8cm，直徑約1.2mm。灌胃針的尖端焊有一小圓金屬球，金屬球為中空的。焊金屬球的目的是防止針頭刺入氣管或損傷消化道。針頭金屬球端彎曲成20°左右的角度，以適應口腔、食道的生理彎曲度走向。(三)其它途徑給藥方法1.呼吸道給藥：呈粉塵、氣體及蒸氣或霧等狀態的藥物或毒氣,均需要通過動物呼吸道給藥。如實驗時給動物***作吸入麻醉、用鋸末煙霧制作慢性氣管炎動物模型等，特別在毒理學實驗中應用更為廣泛。2.皮膚給藥：為了鑒定藥物或毒物經皮膚的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采用經皮膚給藥方法。如兔和豚鼠常采用背部一定面積的皮膚脫毛后，將一定的藥液涂在皮膚上，藥液經皮膚吸收。3.脊髓腔內給藥：此法主要用于錐管麻醉或抽取腦脊液。4.腦內給藥：此法常用于微生物學動物實驗,將病原體等接種于被檢動物腦內，然后觀察接種后的各種變化。5.直腸內給藥：此種方法常用于動物麻醉。兔直腸內給藥時,常采用灌腸的膠皮管或用14號導尿管代替。6.關節腔內給藥：此法常用于關節炎的動物模型復制。